Cath
Une mutation silencieuse n’entraine pas de problème sur la protéine qui en suivra puisque malgré l’altération du codon, l’acide aminé reste le même.
Vrai
Faux
Quelle conséquence entraine une désamination de base?
La base homologue ne pourra pas se lier à la base désaminée, et donc cette paire de bases sera éliminée lors de la réplication suivante.
La base homologue sera changée. A-T deviendra G-C et vice versa suite à une réplication.
Cela laissera un vide puisqu’aucune autre base ne peut s’y appareiller et il y aura éventuellement un effet clastogène.
Aucune de ces réponses.
Si deux allèles régissent l’expression d’une protéine, et que l’une d’elle est mutée de sorte qu’il y a une perte de fonction, il en résultera une haplo-insuffisance qui entrainera des complications.
Vrai
Faux
Repérez l’intru :
Mini-satellite
Micro-satellite
SNP
Aucune de ces réponses, ce sont tous des polymorphismes
CNP
Lors d’une erreur pendant la réplication de l’ADN, comment les systèmes de réparation font-t’ils pour savoir sur quel brin est l’erreur?
Les brins sont inversés et la réplication s’effectue toujours en 5’-»3’, c’est donc le brin de ce sens qui sera réparé.
Le brin néo-synthétisé n’est pas encore acétylé, ce qui permet de le différencier du brin parental.
Le brin néo-synthétisé n’est pas encore méthylé, ce qui permet de le différencier du brin parental.
Le complexe de réplication est lié au brin parental qui lui sert de matrice, ainsi il n’a qu’a reculer pour exciser les bases mésapareillées.
Quel est le rôle de l’ubiquitinylation?
L’ubiquitinylation sert de protection contre le MHC, sans celle-ci, les protéines seraient considérées comme du non-soi.
L’ubiquitinylation aide au repliement final de la protéine.
L’ubiquitinylation sert de signal pour la dégradation.
L’ubiquitinylation sert à activer les cyclines et permet au CD de se lier à celle-ci pour continuer le cycle de la réplication.
Vrai ou faux, l’ATR est un oncogène?
Vrai
Faux
À quelle étape de la réplication cellulaire la recombinaison homologue?
Anaphase 1
Metaphase
Prophase 1
Metaphase 2
Prophase 2
Aucune de ces réponses
Le taux d’erreur lors de la copie d’un brin d’ADN ou d’ARN est-il le même?
Les ARN polymérases font autant d’erreurs que les ADN polymérase.
Les ARN polymérase font plus d’erreurs vu leur plus grande vitesse d’intégration de base.
Les ARN polymérase font moins d’erreurs vu leur activité proof reading.
Les ADN polymérase font moins d’erreurs vu leur activité proofreading.
Aucune de ces réponses.
À quoi sert l’activité exonucléase 5’-»3’ ?
S’il y a une erreur lors de la réplication, les nucléotides récemment ajoutés peuvent être excisés pour être remplacés par les bons par l’exonucléase 5’-»3’.
L’exonucléase 5’-»3’, lorsque lié au clamp loader, permet de stabiliser la réplication et donc d’en augmenter la vitesse.
L’exonucléase 5’-»3’ permet de retirer les fragments d’Okazaki lors de la réplication de l’ADN.
L’exonucléase 5’-»3’ permet d’ajouter les bases correspondantes au brin opposé.
Quelle est la charge de l’ADN?
L’ADN est chargé négativement
L’ADN est chargé positivement
L’ADN est neutre
L’ADN est zwitterionique
À quelle longueur d’onde l’absorbance de l’ADN est-elle maximale?
230nm
220nm
280nm
260nm
Une fois digéré, 2 extrémités ‘’blunt’’ peuvent être recollés par une réaction de ligation.
Vrai
Faux
Laquelle de ces techniques n’est pas une technique de transfection?
Heat shock
Agent cationique lipidique
Calcium phosphate
électroporation
Aucune de ces réponses
Si vous voulez amplifier une séquence située dans un intron, quelle modification apporterez-vous aux conditions du PCR?
Vous utiliserez une polymérase ayant une plus haute thermostabilité.
Vous utiliserez de l’ADN génomique comme matrice.
Vous utiliserez des amorces spécifiques aux séquences bordant l’intron contenant la zone à amplifier.
Vous augmenterez la quantité de matrices pour avoir plus de chance d’amplifier l’intron.
Que recherchez-vous pour un bon design d’amorce? Prenez la réponse qui semble la meilleure.
Elles doivent avoir un G ou un C bordant chacune de leur extrémité, ont une température d’hybridation de 65-75°C.
Un taux de 40-60% de GC, ont une température d’hybridation de 55-65°C.
Un taux de 40-60% de AT, ne doivent pas faire de dimères, ont une température d’hybridation de 55-65°C.
Elles doivent avoir un A ou un T bordant chacune de leurs extrémités, ne doivent pas faire de dimères.
Laquelle des descriptions ci-dessous décrit le mieux le fonctionnement du gène chip?
Un didéoxynucléotide à la fois est ajouté à une séquence inconnue, pour ensuite être lavé et analysé, l’opération est répétée en variant le nucléotide pour obtenir la séquence exacte.
Un fragment d’ARN est digéré par plusieurs enzymes de restriction pour obtenir un patern unique qui permet de déterminer la séquence.
Une séquence d’ARN biotinylé s’hybride à une sonde spécifique connue pour ensuite être détectée par leur fluorescence.
Si vous voulez quantifier un échantillon d’ADN de concentration 100 pg/ml, quel est la méthode idéale?
La méthode Southern blot
La méthode Hoechst 33258
La méthode des ratios d’absorbance à 260 nm et 280 nm
La méthode PicoGreen
Une fois l’ADN lié avec les sondes, pourquoi diminue-t-on la concentration en sel entre chaque lavage?
La stringence diminue avec la concentration de sel, ce qui élimine les liaisons non-spécifique
Une trop haute concentration en sel force la liaison de duplex d’ADN non-spécifique.
Pour diminuer la quantité de produits indésirable et ainsi augmentée la pureté de l’ADN isolé
Aucune de ces réponses
Choississez l’énoncé qui convient le mieux à la technique de détection de protéines par anticorps monoclonaux ELISA-ELISPOT.
Un anticorps de détection sert de matrice. La séquence spécifique à celui-ci vient s’y lier, il est ensuite détecté lors de l’ajout du complexe HRP-avidine et du substrat de l’enzyme.
Un anticorps primaire sert de matrice, un anticorps de capture assure le lien entre la matrice et la protéine d’intérêt. Un troisième anticorps biotinylé se lie à la protéine d’intérêt pour ensuite être détecté suite à l’ajout du complexe HRP-avidine et du substrat de l’enzyme.
Un anticorps de détection sert de matrice. Un deuxième anticorps biotinylé se lie à la protéine d’intérêt liée au premier anticorps pour ensuite être détecté suite à l’ajout du complexe HRP-avidine et du substrat de l’enzyme.
Un anticorps de capture sert de matrice. Un deuxième anticorps biotinylé se lie à la protéine d’intérêt liée au premier anticorps pour ensuite être détecté suite à l’ajout du complexe HRP-avidine et du substrat de l’enzyme.
V/F : Une séquence méthylée peut subir une réaction d’endonucléase
Vrai, certaines enzymes de restriction ne seront pas inhibées par la méthylation.
Faux
V/F : Il est utile de faire une réaction de ligation avec 2 séquences digérée par 2 enzymes de restriction qui sont des néoisoschizomères entre eux.
Vrai, ils reconnaissent la même séquence et coupent au même site. La ligation est donc possible.
Faux, ils reconnaissent la même séquence, mais ne coupent pas au même site. La ligation n’est donc pas possible.
Quels sont les 3 caractéristiques de bases essentielles au bon fonctionnement d’un plasmide de clonage?
L’origine de réplication, un MCS et un gène de résistance aux antibiotique.
Un promoteur, un signal de polyadénylation et un gène de résistante aux antibiotiques.
Un tag, un origine de réplication et un MCS.
Un origine de réplication, un MCS et une séquence d’amorce standard.
Dans quelle phase de croissance les bactéries doivent-elles être pour pouvoir les rendre compétente?
Phase stationnaire
Phase de déclin
Phase de latence
Phase exponentielle
Peu importe la phase
Une mutation dans la région du promoteur entrainera quel type de problème?
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